核酸酶靶向切割和释放(cleavage under target and release using nuclease,CUT&RUN)技术,这个听起来比较高大上的新一代实验技术,你还没听过吗?简单来说,它是检测蛋白质与DNA互作的一种新的方法,已经在逐步取代染色质免疫沉淀(CHIP)实验了。为什么这么说呢?一直以来,CHIP实验被作为验证蛋白质-DNA相互作用的主要方法,但该方法一直是有局限性的,并且,在实验过程中很容易出现各种不稳定因素,以及出现的不易判断的假阳性或假阴性信号,信噪比低,细胞起始量要求高等情况都会影响结果的判读。而新起之秀--CUT&RUN技术能够很好的规避这些问题,更容易做出满意的结果。有些人会质疑,这种新技术是什么检测原理呢?这种检测结果严谨可靠吗?
接下来小编会为您详细讲解~
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CUT&RUN的工作原理
CUT&RUN是对CHIP实验的革新性技术,其改进点在于观察到核的轻微MNase处理释放单核小体和TF-DNA复合物,留下寡核小体。TF两侧的定向裂解将把TF-DNA复合物释放到上清液中,将剩余的基因组留在沉淀的核中。通过在冰上进行简短的消化反应,我们可以在TF结合的MNase扩散到周边的基因组和裂解可接近的染色质之前在上清中恢复TF-DNA复合物。根据其步骤可以理解其原理为,Concanavalin A或者说是ConA beads被lectin(凝集素)包裹,这个beads可以结合细胞膜/细胞核上的glycoconjugates(糖复合物)。膜是通透的,染色质可以被特异的抗体结合。下一步,加入AG蛋白-micrococcal核酸酶(也叫做pAG-MNase),这个pAG-MNase结合到抗体连接的染色质上,然后通过适量浓度的Ca2+来激活pAG-MNase,从而切割下来被沉淀下来的DNA。被切下来的DNA游离到上清里,通过离心我们可以把这些抗体结合的DNA分离出来。之后提取DNA,可以选择做qPCR,或制备文库后进行测序,进行数据分析。

图1 CUT&RUN原理图
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CUT&RUN的实验流程
实验开始前首先要全面考虑你的细胞类型、实验条件、对照、抗体,从而完美地解决你的科研问题。细胞数量上,推荐每个样品1—2万个细胞。当然你可以尝试不同的细胞数量来优化你的实验。对于试剂盒来说,一般最少你可以用1000个细胞来进行实验。对照和标准化是整个实验的关键步骤。阳性对照推荐使用H3K4me3或者H3K27me3(当然有些试剂盒中会包含相应阳性和阴性对照);阴性对照推荐使用Rabbit IgG。当然有些试剂盒中会包含相应阳性和阴性对照。其次,你还可以使用spike-in来进行标准化。以下基本步骤可作为参考。
A
Beas活化
Beads的活化在1.5ml tube里进行,你还需要与之匹配的magnetic rack。首先震荡beads,然后快速离心一下。接下来把beads放在magnetic rack上,待溶液澄清了,吸走上清。然后用活化buffer清洗重悬,注意活化buffer要放置在冰上。

B
Beas与细胞结合
首先收集你的细胞,用wash buffer清洗细胞两次,最后用wash buffer重悬你的细胞。之后把beads加入到细胞悬液里。轻微震荡或用移液枪吹打。室温静置10分钟。

C
Beas与一抗结合
上一步静置后,把beads放在magnetic rack上,移除上清。加入冷的抗体buffer,这一步要快,防止beads干燥,但是不要太剧烈,防止细胞裂解。然后加抗体,轻微震荡,放在4度摇床上旋转孵育2小时或过夜。

D
pAG-MNase酶结合
快速离心样本,把管放在magnetic rack上。待溶液澄清,移除上清。加入冷的digitonin buffer。清洗2遍。清洗后用digitonin buffer重悬beads。pAG-MNase和digitonin buffer应放置在冰上。在样品里加入pAG-MNase,室温孵育10分钟,快速离心,放置magnetic rack上,移除上清。使用digitonin buffer清洗beads两遍。然后用digitonin buffer重悬beads。

E
DNA消化和释放
把样品放在冰上,加入CaCl2,因为Ca2+会活化pAG-MNase,轻微震荡后,摇床上4度孵育。之后加入stop buffer。如果你想加入spike-in,那么加完stop buffer后可以加入spike-in DNA。之后把管子放在magnetic rack上,把上清液移到新的管里。之后可纯化DNA,继续下游检测。

F
用qPCR定量DNA,构建下游NG-seq DNA文库
对纯化后的DNA可进行qPCR或NG-Seq鉴定、定量分析。
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CUT&RUN的优势
CUT&RUN技术虽萌芽不久,但已受到众多科研工作者的青睐,CNS等高分杂志也对该技术给予了积极评价及肯定。目前已有多篇与CUT&RUN技术相关的文献发表在了CNS等高分杂志上。正因为该技术近几年的火爆,CUT&RUN也有望成为蛋白质—DNA互作研究的下一代主流技术。
目前已有多篇文献对该技术和chip技术进行了详细的对比性实验,验证了CUT&RUN技术的优势及准确性。接下来给大家介绍一篇文献,便于大家对CUT&RUN技术有一个详细和深入的了解。
在“Targeted in situ genome-wide profiling with high efficiency for low cell numbers”这篇文献里,作者比较了CUT&RUN技术与传统CHIP技术,验证了无论在实验操作可控性,细胞数量要求,还是测序结果信噪比方面,CUT&RUN技术都要比CHIP技术有更多的优势。



图3 CUT&RUN可以检测低至100细胞的H3K27me3基因组分布

图4 用CUT&RUN检测CTCF的结合位点,比ENCODE中的CTCF ChIP-seq对比
了解了CUT&RUN技术的原理,操作步骤,技术优势,您是否已经对它倾心了呢?如果您对该技术感兴趣,而临床或科研工作繁忙,抽不开身尝试的话,天津舍为斯生物技术有限公司现推出CUT&RUN实验半价促销优惠活动(仅限前五名,活动有效期截止:2022年6月30日)供您选择,如果您已动心,就请赶快联系我们吧(tel:15302060382)。
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